Modulo I Procedimientos en Parasitologia

PROGRAMA DE EDUCACION CONTINUA 20009



Dra. Silvia Beltran



SANTA CRUZ DE LA SIERRA, BOLIVIA 2009

I.-MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD EN EL ÁREA DE PARASITOLOGIA
El personal debe estar debidamente uniformado con la vestimenta adecuada (zapatos cerrados, pantalón, mandil, guantes, barbijos y gafas de protección), así como el cabello bien recogido.
Los envases que contengan soluciones toxicas deben estar con sus respectivas identificaciones.
No consumir alimentos de ninguna clase dentro el área.
Lavarse las manos antes y después de procesar las muestras.
Colocar la basura de acuerdo al color de bolsa que corresponda.
No adoptar actitudes que puedan poner en riesgo la integridad de su persona o de su compañero de trabajo.
No permitir la entrada de niños ni animales al área de trabajo.
Considerar que dada la situacion de endemia de varias enfermedades de trasmisión por fluidos como Hepatitis, y otras enfermedades existe la posibilidad de que nos topemos con muestras que tengan estos virus y se debe tomar precauciones y trabajar como si todas las muestras fueran potencialmente portadoras.

II.- PROTOCOLO DE TRABAJO

PREPARACION DEL AREA DE TRABAJO DE LA SECCIÓN DE PARASITOLOGÍA
1.- Colocar todo material sucio en un envase grande que contenga una solución de hipoclorito de sodio al 1% (2 partes de lavandina que contiene hipoclorito de sodio al 5% y 8 partes de agua), posteriormente será llevado al área de esterilización.
2.- Realizar asepsia a toda la superficie de trabajo con solución de hipoclorito de sodio al 0.5% (la solución es solo efectiva durante 24hrs), dejar que actúe durante 20 minutos. o Realizar asepsia a toda la superficie de trabajo con alcohol al 70%.
3.- Sacar el forro del microscopio y proceder a una limpieza exhaustiva, con un paño de seda limpiar la parte mécanica del microscopio la parte óptica no se debe limpiar todos los díoas sino cuando se haya topado con soluciones contaminadas ( los objetivos y los oculares, no se debe limpiar con ningún paño excepcionalmente con material especial provisto por Hansa) de uso común limpiar la parte mecánica.
4.- Colocar todo el material a utilizar sobre la superficie de trabajo.
5.- Proceder a recepcionar las muestras de heces para el posterior procesado.
6.- Verificando nombre codigo de barras pruebas que se debe realizar con esta muestra.
7.- Entrar en el sistema verificando las pruebas antes de desechar . Si hay infección se pueda hablar con el Médico para ver si no desea más pruebas en su paciente.

III. RECEPCION DE LAS MUESTRAS

OBTENCION DE LA MATERIA FECAL
La muestra adecuada es la emitida naturalmente, la materia fecal debe recogerse en un recipiente (frasco o caja plástica), limpio y seco, de boca ancha entregado en el Laboratorio o comprado en la Farmacia.
Son muestras inadecuadas las que se han contaminado con orina, agua, si se han mantenido por mas de un día a temperatura ambiente, las que se obtienen después de un estudio radiológico del tubo digestivo, en el cual se usa bario y nunca usar laxantes aceitosos.
. Enviar al laboratorio inmediatamente después de obtenida la muestra. Lo ideal es que las muestras se evacuen y recojan en el laboratorio. Para poderlas estudiar después de un tiempo breve.
Refrigeración: este es el método más sencillo y práctico para la conservación de la muestra por algunas horas o por un día, el frasco se debe colocar en el refrigerador a 4 grados centígrados pero no en el congelador, de este modo se puede investigar parásitos bacterias con excepcion de campilobacter

PROCEDIMIENTO
Verificar el envase que contiene la muestra tenga la respectiva identificación:
a. -Nombre completo del paciente
b. -Número de solicitud
c. -Pruebas a realizar
d- Codigo de barras
Registrar en el cuaderno de ingreso el número de solicitud de la muestra.
Registrar en el cuaderno de Parasitología la fecha, verificar la numeración e identificar los envases de acuerdo a la numeración interna correlativa, con sus etiquetas. (Nombre del Paciente, número de solicitud y pruebas a realizar). En caso de coprocultivo, no sacar la etiqueta del envase, colocar los datos del paciente en el cuaderno manualmente.
Procesar con preferencia primeramente las muestras Urgentes, Amebas en Fresco y Mocos fecales.
A toda muestra que ingrese en el área se realizará coproparasitológico simple y el método de concentración de Ritchie modificado sin excepción.



IV.- FUNDAMENTO
El diagnóstico de las infecciones parasitarias puede realizarse por método directo, diseñado para observar o detectar el parásito o algunos de sus elementos identificables, el cual consta de un examen microscópico directo en muestras de heces frescas.
Como la expulsión de huevos de parásitos es intermitente, una muestra única no siempre permite encontrar e identificar los parásitos existentes, por lo tanto se aumenta la posibilidad cuando se solicita un Coproparasitologico seriado, informando al paciente que debe traer al laboratorio tres muestras fecales, con intervalos entre una y otra de uno a dos días, de evacuaciones en forma normal.

EXAMEN DIRECTO
COPROPARASITOLOGICO SIMPLE O SERIADO

EQUIPO
Microscopio
Centrífuga

MATERIAL
Portaobjetos
Cubreobjetos
Tubos cónicos de plásticos centrífuga
Gradilla para tubos
Aplicador (Palitos de madera)

REACTIVOS
Solución fisiológica
Lugol

PROCEDIMIENTO
1.-Preparar el Material de trabajo, mesones y extractores de aire.
2.-Colocar las muestras a procesar en la campana.
3.-Numerar las muestras, y registrar en el cuaderno de trabajo.
4.-Numerar los portaobjetos, los vasos desechables, los tubos de centrífuga, con el numero correspondite.
5.-Colocar en los portaobjetos 1 gota de solución fisiológica en un extremo y 1 gota de lugol al otro.
6.- Con un aplicador tomar una pequeña porción de la muestra de la superficie y la parte profunda (Observar si tiene moco o sangre para tomar esta porción).
7.- Mezclar esta porción de la muestra, primero en la gota de solución fisiológica y luego en la de lugol.
8.- Colocar un cubreobjeto en cada mezcla, evitando que se formen burbujas.
9.- El examen coproparasitologico comprende dos partes :
A-.examen macroscópico
B-.examen microscópico
Registrar el examen macroscópico de las heces en el cuaderno de trabajo

Consistencia -. Liquida, semilíquida, blanda, pastosa, dura, mucosa.
Las muestras blandas o liquidas indican la posible presencia de trofozoitos de protozoarios intestinales.
Los quistes de protozoarios se encuentran con más frecuencia en heces formadas. Los huevos y larvas de helmintos pueden encontrarse en heces liquidas o formadas.

Color-.verdosa, amarillo, marrón a blanco en lactantes, café claro u oscuro.

Variaciones patológicas
Blanco grisáceo.- (acolicas) en obstrucción biliar, ingestión de bario
Verdosas.- en presencia de biliverdina (por oxidación de la bilirrubina).
Amarillo oro.- en el espasmo neurogenico del esfínter de oddi con salida violenta de la bilis y en las insuficiencias pancreáticas.
Rojizas.- (sangre) en las hemorragias bajas.
Negruscas.- (en melenas) en hemorragias altas o por ingestión de hierro o carbón.

Búsqueda de Parásitos Adultos (macroscópicamente visibles) en la superficie de la muestra.-se escudriña la muestra con un baja lenguas en búsqueda de elementos macroscopicos como: proglotides de cestodes y helmintos adultos como áscaris lumbricoides, enterobius vermicularis
Presencia de mucus
Sangre (microscópicamente visibles).

EXAMEN MICROSCOPICO

8.-Registrar el examen microscópico observando en las láminas preparadas, no menos de 20 campos.
9.-Parásitos (Larvas, huevos, quistes, trofozoitos, zoitos)

Leucocitos.- estas células en materia fecal, generalmente se encuentran asociadas a moco y se observan en diferentes enfermedades intestinales. Se informa la cantidad de células observadas por campo
Eritrocitos.-se observan cuando hay hemorragias del colon, hemorroides, y fisuras sangrantes, etc. Aparecen con abundancia en el síndrome disentérico. Se informa la cantidad de eritrocitos observados por campo.
Levaduras.- pueden observarse en condiciones normales, pero aumentan notoriamente cuando existe desequilibrio de la flora bacteriana especialmente en la terapia con antibióticos. Son ovalados, algunas veces con gemación y de tamaño aprox. De 2 a 4 micras.
Cuando estas células con gemación se asocian se puede informar como: presencia de levaduras como seudo hifas o seudo micelios o reportar como presencia de hongos. Se informa de la siguiente manera: escasa, regular cantidad y abundante.
Corpúsculos de almidón.-se observan como gránulos de forma y tamaño irregulares. Son fácilmente identificados, por que en las preparaciones con lugol toman color rojo azul violeta, según el grado de digestión que hayan sufrido, los no digeridos son de color violeta.
Restos alimenticios de origen vegetal o animal mal digeridos
Las células y fibras vegetales se ven, en ocasiones, formando retículos en forma de panal y a veces en forma de espiral. Esto resto de vegetales pueden aparecer en síndrome de de mala absorción o asociadas a diarreas.
Las fibras musculares con diversos grados de digestión .de modo normal se observan fibras musculares digeridas con la estriacion algo borrosa se informa de la siguiente forma: escasas, regular cantidad y abundantes.




V.- METODO DE CONCENTRACION POR SEDIMENTACION
METODO DE RICTCHIE MODIFICADO

EQUIPO
Microscopio
Centrífuga

MATERIAL
Portaobjetos
Cubreobjetos
Tubos plásticos de centrífuga
Gradilla para tubos
Gasa
Embudos
Aplicadores
Vasos desechables
Tapón para tubos
REACTIVOS
Solución fisiológica
Lugol
Formol al 10%
Gasolina

FUNDAMENTO
Su finalidad es aumentar el número de parásitos en el volumen de materia fecal que se examina, mediante procedimientos de sedimentación. En el material concentrado se encuentran mayor cantidad de parásitos que en el resto de la materia fecal, principalmente de quistes de protozoo, huevos y larvas de helmintos.
Tiene el inconveniente de lisar la mayoría de trofozoitos presentes en la muestra, por lo que siempre debe realizarse previamente el examen al fresco con solución fisiológica.

MUESTRA
Heces frescas

PROCEDIMIENTO
1.- En el vaso desechable colocar 4ml de formol al 10% y 4ml de solución fisiológica.
2.- Disolver 2ml o 2gr. de heces aproximadamente en el vaso.
3.- Filtrar a través de gasa doblada en un tubo, agregar 3ml de gasolina y tapar.
4.- Agitar vigorosamente durante 30 segundos, dejar reposar unos minutos.
5.-Centrifugar durante 2 minutos a baja velocidad.(1000 RPM)
6.- Destapar y desechar el sobrenadante.
7.-Mezcle el sedimento golpeando suavemente el tubo.
8.- Deposite un gota del sedimento en un portaobjeto, añadiendo una pequeña gota de lugol sobre la gota del sedimento, cubrir con cubreobjeto la gota.
9.- Observar al microscopio los portaobjetos preparados.
10.- Reportar en el cuaderno con letra clara lo observado.

VI.- AMEBAS EN FRESCO
EQUIPO
Microscopio

MATERIAL
Portaobjetos
Cubreobjetos
Aplicadores

REACTIVOS
Solución fisiológica
Lugol

FUNDAMENTO
las formas móviles de los parasito se encuentran con mayor frecuencia en heces liquidas. Debido a que los trofozoitos no sobreviven durante periodos largos y su movilidad es de importancia diagnostica, las muestras no deben examinarse más de una hora después de haberse evacuado.

MUESTRA
Heces frescas

PROCEDIMIENTO
1.- Colocar las muestras a procesar en la campana.
2.- Numerar los portaobjetos
3.- Colocar en los portaobjetos 1 gota de solución fisiológica en un extremo y 1 gota de lugol al otro.
4.-Con un aplicador tomar una pequeña porción de la muestra de la superficie y la parte profunda (si tiene moco y/o sangre, tomar esta porción).
5.-Mezclar esta porción de la muestra, primero en la gota de solución fisiológica y luego en la de lugol.
6.-Colocar un cubreobjeto en cada mezcla, evitando que se formen burbujas.
7.-Registrar el examen macroscópico de las heces en el cuaderno.
Color
Consistencia
Presencia de mucus
Sangre (macroscópicamente visibles).
8.-Registrar el examen microscópico observado en las láminas preparadas, presencia o ausencia de amebas.

VII.- MOCO FECAL
MATERIAL
Portaobjetos
Cubreobjetos
Aplicadores
Pinza

EQUIPOS
microscopio
REACTIVOS
Solución fisiológica
Lugol
Etanol
Giemsa
Papel tornasol

FUNDAMENTO
El moco fecal es util para diferenciar una infeccion bacteriana de una viral.

PROCEDIMIENTO
1.- En un portaobjeto: proceder igual que el parasicológico simple, antes de colocar el cubreobjetos en la solución fisiológica medir el pH, con la pinza tomar el papel universal de pH y empaparlo en la muestra disuelta. Retirarlo y leer en la tabla de colores de pH, registrar el valor.
2.-En el microscopio observar si hay parásitos, levaduras, leucocitos o piocitos y también aumento de la flora bacteriana.
3.-En otro portaobjeto realizar un extendido del moco con un aplicador cuidando que el extendido no sea ni muy grueso ni muy delgado, luego dejar secar al medio ambiente.
4.-Tinción de Giemsa:
Una vez seca la muestra, fijar la muestra con etanol por tres minutos.
Cubrir con el colorante de Giemsa preparado y dejar actuar por 15 a 20 minutos.
Lavar con agua corriente.
Secar y observar con aceite de inmersión. Realizar el recuento hasta 100 células.
Reportar en el cuaderno lo observado con letra clara.

VIII.- SUSTANCIAS REDUCTORAS
EQUIPOS
Mechero
centrífuga

MATERIAL
Tubos
Gradillas
Pipetas plásticas
Pinzas de madera
Aplicadores

REACTIVOS
Solución fisiológica
Reactivo Benedict

FUNDAMENTO
Los azúcares reductores en materias fecales son detectados con el reactivo de Benedict, para la prueba se emplea materia fecal líquida o diluida si es necesario. Se ha encontrado que siempre hay presencia de glucosa y ausencia de lactosa en diarreas de origen bacteriano tóxico, mientras que lo contrario se encuentra en las diarreas virales.

PROCEDIMIENTO
1.- En el primer tubo colocar 1ml de solución fisiológica
2.- Adicionar heces y mezclar vigorosamente.
3.- Dejar reposar durante 3 minutos o centrifugar
4.- En el segundo tubo de vidrio colocar 3ml de reactivo de benedict.
5.- Del primer tubo, tomar con la pipeta plástica el sobrenadante, y poner este en el segundo tubo unas 6 gotas, calentarlo y observar.
6.- Si cambia de color azul y a verde o naranja es positivo.
7.- Si no cambia de color es negativo.

IX.- METODO DE CONCENTRACION BAERMAN-MORAES
MATERIAL
Embudos de vidrio
Pinza de madera
Manguerita
Tubo de centrífuga.

EQUIPOS
Centrífuga
microscopio

REACTIVOS
Agua a 37º- 40º C


Procedimiento
Se basa en el hidrotropismo positivo de las larvas, las que son atraídas por el agua caliente, resultando fácil la concentración, con este método se logra diagnosticar la presencia de larvas de Strongyloides stercoralis.

MUESTRA:
Heces

PROCEDIMIENTO
1.-Montar sobre el soporte metálico, un entorno circular metálico de 12 cm de diámetro para un embudo, y colocar sobre el mismo un embudo con una malla metálica, conectando al mismo un pequeño tubo de goma con una llave interior.
2.- A continuación verter agua potable de 37ºC al embudo hasta el borde de la malla metálica.
3.- Colocar entre 10 a 20gr de heces sobre la malla metálica, tapizada por venda de gasa o, por una lámina de papel filtro fino, si las heces son muy líquidas.
4.- Efectuar el paso de las heces por el entorno de la malla, haciendo que el nivel del agua entre en contacto con las heces.
5.- De una a una hora y media mas tarde, abrir la llave de paso y recoger el agua para someter al líquido a centrifugación por 5 minutos a 1500 r.p.m. y observar una o dos gotas del sedimento, donde se buscará la presencia de larvas, las que pueden ser rabdithoides o filariformes, móviles o inmóviles.

X.- INVESTIGACION DE OXIURO
Se hacen dos técnicas
1.- Test de Graham.
2.- Anal swab
Test de Graham.

MATERIAL
Cinta adhesiva
Portaobjetos

EQUIPO
Microscopio

FUNDAMENTO
Ya que los huevos de E. vermicularis se depositan habitualmente fuera del organismo, en la región peri anal, y no en el tubo digestivo, para el diagnostico de la oxiurasis se recurre a frotis anal, indicar al paciente que debe llegar al laboratorio en las primeras horas de la mañana antes del baño o la evacuación de la materia fecal .
Procedimiento
Obtener la muestra en la cinta adhesiva luego colocar la cinta en porta-objeto, aplanarlo con algodón o gasa. Observar al microscopio buscando los helmintos adultos o los huevos
El informe será: NEGATIVO: Ausencia de helmintos adultos y huevos
POSITIVO: Presencia de helmintos adultos o huevos

XI.- ANAL SWAB
MATERIAL
Tubos
Hisopos de algodón
Portaobjetos
Cubreobjetos

EQUIPO
Centrífuga
Microscopio

REACTIVOS
Solución fisiológica
Lugol

PROCEDIMIENTO
Tomar la muestra peri anal con un cotonete y este colocarlo en un tubo contenido 0.5 ml de solución fisiológica
1.- Registrar en el cuaderno el nombre del paciente que esta escrito en el tubo con la muestra. Subrayar la prueba o resaltar.
2.-agitar en el interior de la solución el hisopo, exprimir por las paredes del tubo, sacar el hisopo.
3.- Centrifugar durante 2 minutos a baja velocidad.
4.-Desechar el sobrenadante. El sedimento preparar en el portaobjeto cubriéndolo con el cubreobjeto.
5.- Observar al microscopio y registrar los parásitos que observe.

XII.- SANGRE OCULTA EN HECES CON DIETA
MATERIAL
Papel filtro
Aplicador

REACTIVOS
Solución de Bencidina al 1% en ácido acético diluido al 50%
Agua oxigenada 10 vol

FUNDAMENTO
Cuando la cantidad de sangre presente en materias fecales es muy pequeña y no se observa microscópicamente, puede detectarse mediante el uso de sustancias que reaccionen con los derivados de la hemoglobina, la cual es de tipo peroxidasa, además de la bencidina, guayaco, ortotoluidina, etc., que con peróxido de hidrógeno producen una reacción de color. Para mayor exactitud de las pruebas, se debe tener la precaución de no ingerir carne roja durante los 3 días previos al examen el uso de drogas como aspirina, corticoides, fenilbutazona y medicamentos con hierro pueden producir pequeñas hemorragias. La prueba no es específica para hemoglobina humana, pues es positiva con hemoglobina de animales y con sustancias que actúan como peroxidasa.

PROCEDIMIENTO
Se puede realizar en papel o en tubo
1.- Colocar una pequeña cantidad de heces sobre un pedazo de papel filtro.
2.- Se añade una cantidad muy pequeña de bencidina.
3.- Se vierte unas gotas de ácido acético glacial y luego agregar 3 gotas de peróxido de hidrógeno al 3% mezclar y esperar de 30 segundos a 1 minuto.
RESULTADO Positivo: Halo verde azulado.
Negativo: No cambia de color.

XIII.- SANGRE OCULTA EN HECES SIN DIETA
MATERIAL

REACTIVOS
Buffer tris pH 7.5
Cassetts
Human (kit).

FUNDAMENTO
La hemoglobina humana (hHb) en la muestra reacciona con un reactivo que contiene partículas de color azul y un anticuerpo monoclonal anti – hHb humano. El complejo inmune migra a la zona de prueba donde es capturado por un segundo anticuerpo inmovilizado directado contra Hhb formando una línea de de prueba (T) de color azul que indica un resultado positivo. El reactivo que no reacciono continúa migrando y se une en una segunda línea a anticuerpos anti–IgG de ratón inmovilizados. Esta línea de control (C) indica el correcto funcionamiento y el apropiado manejo del reactivo.

PROCEDIMIENTO
1.- Sacar el frasco con el buffer y el casset de su caja. Desenroscar la tapa del frasco y con el aplicador tomar la muestra en diferentes lugares de las heces,
2.- Remover el exceso de muestra con un papel absorbente. La cantidad de muestra remanente es suficiente para la prueba.
3.- Reinsertar la tapa con el aplicador en el frasquito y cerrar bien.
4.-Agitar vigorosamente el tubo.
5.- Sacar el Cassett de su empaque y colocarlo en la mesa en posición horizontal.
6.- Cubrir la tapa con el papel absorbente y romper el extremo de la tapa.
7.- Dispensar 2 gotas completas en la ventana circular.
8.- Esperar 5 minutos. Confirmar resultados negativos después de 10 minutos.

Evaluación
NEGATIVO: Solo una línea
POSITIVO: Dos líneas (aún una línea débil)
INVALIDADO: No aparece ninguna línea.

XIV.- ADENOVIRUS Y ROTAVIRUS EN HECES
MATERIAL
Tubos
Pipetas de plástico
Gradillas

REACTIVOS
Buffer de extracción
Tiritas
RIDA Quick (kit)

FUNDAMENTO
Es una prueba inmunocromatografica de flujo lateral de un solo paso, en la cual los anticuerpos específicos dirigidos contra ambos virus están acoplados a partículas rojas (específicos para rotavirus) o azules (específicos para adenovirus) de látex. Otros anticuerpos específicos contra ambos agentes patógenos están unidos fuertemente sobre la membrana. Primeramente se suspende la muestra de heces en el buffer de extracción y se deja sedimentar. La tira de prueba se sumerge en el sobrenadante de la muestra, aquí esta se une con las partículas coloreadas de látex, y en caso positivo se acopla al anticuerpo presente; atraviesa la membrana y se enlaza con las bandas específicas de captura. Según el antigeno presente en la muestra se observara una banda azul y /o una banda roja.

PROCEDIMIENTO
1.- Sacar los reactivos de la heladera para que estén a temperatura ambiente (20º a 25º).
2.-Numerar el tubo y colocar 1ml de buffer de extracción.
3.- Adicionar 100ul a 50ul de heces aproximadamente.
4.- Mezclar vigorosamente y dejar reposar durante 3 minutos.
5.- Colocar el sobrenadante en otro tubo y colocar la tirita hasta la marca de la flecha como máximo.
6.- Leer el resultado a los 5 minutos y registrarlo en el cuaderno.

EVALUACIÓN DEL RESULTADO.
POSITIVO: a) Adenovirus positivo además de línea verde hay línea azul
b) Rotavirus positivo además de la línea verde hay línea roja
c) Adenovirus – Rotavirus positivo, línea verde, línea azul, línea roja.
NEGATIVO: Solo la línea verde que es la de control
INVALIDADO: No aparece ninguna línea.

XV.- ROTAVIRUS EN HECES
MATERIAL
Tubos
Pipetas de plástico
Gradillas

REACTIVOS
Buffer
Tiritas
RIDA Quick (kit)

FUNDAMENTO
La infección por rotavirus humano es una de las causas principales de enfermedades diarreicas en el mundo, produciendo al menos el 30% de los casos de gastroenteritis aguda infantil, afectando especialmente a lactantes y preescolares la determinación en la materia fecal esta basado en el principio.
Es una prueba inmunocromatografica, en la cual los anticuerpos específicos dirigidos contra el virus están acoplados a partículas rojas (específicos para rotavirus)de látex. Otro anticuerpo específico contra el agente patógeno está unido fuertemente sobre la membrana. Primeramente se suspende la muestra de heces en el buffer de extracción y se deja sedimentar. La tira de prueba se sumerge en el sobrenadante de la muestra, aquí esta se une con las partículas coloreadas de látex, y en caso positivo se acopla al anticuerpo presente; atraviesa la membrana y se enlaza con las bandas específicas de captura. Si el antigeno esta presente en la muestra se observara una banda roja.

PROCEDIMIENTO
1.- Sacar los reactivos de la heladera para que estén a temperatura ambiente (20º a 25º).
2.-Numerar el tubo y colocar 1ml de buffer de extracción.
3.- Adicionar 100ul a 50ul de heces aproximadamente.
4.- Mezclar vigorosamente y dejar reposar durante 3 minutos.
5.- Colocar el sobrenadante en otro tubo y colocar la tirita hasta la marca de la flecha como máximo.
6.- Leer el resultado a los 5 minutos y registrarlo en el cuaderno.

EVALUACIÓN DEL RESULTADO.
POSITIVO: Rotavirus positivo además de la línea verde hay línea roja
NEGATIVO: Solo la línea verde que es la de control
INVALIDADO: No aparece ninguna línea.


TRABAJO PRÁCTICO
1. Indique tres diferencias entre un trofozoito y un quiste.
2. Indique los tipos de consistencia que se informan en el examen parasicológico.
3. Cite los tipos de Huevos de Ascaris lumbricoides que se pueden observar.
4. Cite los análisis que se deben de dar prioridad en el área de parasitologia y fundamente su respuesta.
5. Como seleccionar la porción de heces adecuada para realizar el método de concentración.
6. Escriba el resultado de un moco fecal por una infección bacteriana y uno por infección viral, fundamentando su respuesta.
7. Indique tres recomendaciones que contribuyan al buen desempeño en esta área.